Triton-SDS細胞裂解液 樣本裂解

產品簡介：

Triton-SDS細胞裂解液由 Triton X-100、SDS、Tris-HCl等組成，并含有蛋白酶抑制劑成分，可以有效抑制蛋白的降解，并維持原有的蛋白間相互作用。作用原理是利用Triton X-100破壞脂質雙分子層，溶解胞質和細胞膜，破壞分子間微弱結合鍵的大部分蛋白質抗原。其濃度在0.1%～1%時即可滿足幾乎所有溶解的需求，且可補充等離子濃度的鹽及使pH接近中性。所獲得的蛋白質可以用于PAGE電泳，Western，免疫沉淀(Immunol Precipitation，IP)和免疫共沉淀(co-IP)等。不宜用Bradford法測定由Triton-SDS細胞裂解液獲得樣本的蛋白濃度。

產品組成：

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

操作步驟(僅供參考)：

(一)貼壁培養細胞

取Triton-SDS Lysis Buffer置于室溫溶解混勻，加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。

去除培養液，用PBS、NS或無血清培養液清洗1次，低速離心，棄上清，留取沉淀。

按照6孔板每孔加入150～250μl含有PMSF的裂解液的比例加入riton-SDS Lysis Buffer。移液器輕輕吹打，使裂解液和細胞充分接觸。置于冰上或4℃裂解，通常裂解液作用于細胞1～3s內，細胞就會被裂解。通常6孔板每孔細胞加入150μl裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。

10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

進行后續的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

(二)懸浮培養細胞

取Triton-SDS Lysis Buffer置于室溫溶解混勻后加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。

低速離心懸浮細胞，棄上清，收集沉淀。

用手指輕彈細胞，使其松散。按照6孔板每孔細胞加入150～250μl含有PMSF的裂解液的比例，加入Triton-SDS Lysis Buffer。通常6孔板每孔細胞加入150μl裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。

10000～12000g， 4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

進行后續的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

(三)組織樣本

取Triton-SDS Lysis Buffer置于室溫溶解混勻后加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。

把組zhi剪切成細小的碎片，越小越好。

取在液氮或超低溫冰箱中冷凍30min以上的組織，迅速用液氮研磨，研磨過程盡量控制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。

按照每20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃裂解15～30min。

步驟3、4亦可以采用如下過程：按照每20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF的Triton-SDS Lysis Buffer。用玻璃勻漿器或組織研磨器勻漿，直至充分裂解，該過程盡量控制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。

10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

進行后續的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

注意事項：

去除貼壁細胞的培養液后，如果血清中的蛋白沒有干擾，可以不用清洗。

如果裂解不充分可以適當增加裂解液的用量，如果需要高濃度的蛋白樣品，可以適當減少裂解液的用量。

如果細胞量較多，必需分裝成50～100萬細胞/離心管，然后再裂解。大團的細胞較難裂解充分，而少量的細胞由于裂解液容易和細胞充分接觸，相對比較容易裂解充分。

如果組織樣品本身非常細小，可以適當剪切后直接加入裂解液裂解，通過強烈Vortex使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清，用于后續實驗。直接裂解的優點是比較方便，不必使用勻漿器，缺點是不如使用勻漿器那樣裂解得比較充分。

溶解Triton-SDS Lysis Buffer時，應盡量縮短溶解時間，避免裂解液中的有效成分失效。

裂解產物中經常會出現一小團透明膠狀物，屬正常現象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復合物。在不檢測和基因組DNA結合特別緊密的蛋白的情況下，可以直接離心取上清用于后續實驗。如果需要檢測和基因組結合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理打碎打散該透明膠狀物，隨后離心取上清用于后續實驗。

細胞裂解的操作步驟，應置于冰上或4℃進行。

Triton-SDS細胞裂解液 樣本裂解

有效期： 12個月有效。