步驟一,根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康模x擇目標(biāo)Marker。
通過閱讀相關(guān)文獻(xiàn),了解您實(shí)驗(yàn)需要選擇哪些Marker,以及這些Marker之間的邏輯關(guān)系(圈門的父子關(guān)系,比如T細(xì)胞CD3是“父”,而CD4或者CD8就是“子”)。
這里列舉了一些常見的細(xì)胞標(biāo)志Marker:
B Cells | CD19 |
T Cells | CD3, CD4, CD8 |
Treg Cells | CD4, CD25, CD127 |
Th1/Th2/Th17 Cells | CD4, IFN-γ, IL-4, IL-17 |
Dendritic Cells | CD1c, CD83, CD141, CD209, MHC II |
Natural Killer Cells | CD3-, CD16, CD56 |
Macrophage | CD11b, CD68, CD163 |
Monocyte | CD14, CD16, CD64 |
Plasma Cells | CD138 |
Red Blood Cells | CD235a |
B Cells | CD19 |
T Cells | CD3, CD4, CD8 |
Treg Cells | CD4, CD25, Foxp3 |
Th1/Th2/Th17 Cells | CD4, IFN-γ, IL-4, IL-17 |
Dendritic Cells | CD11c, MHC II |
Natural Killer Cells | CD3-, CD49b (clone DX5) or NK1.1 |
Macrophage | F4/80, CD11b, CD80, CD86, CD206 |
Monocyte | CD11b, CD115, Gr-1, Ly-6C |
Plasma Cells | CD138 |
Red Blood Cells | TER-119 |
步驟二,確認(rèn)Marker的表達(dá)位置。
對于細(xì)胞質(zhì)或者細(xì)胞核的Marker,需要對細(xì)胞進(jìn)行固定破膜/破核膜。在做胞質(zhì)或胞核Marker染色實(shí)驗(yàn)操作時(shí),需要先染細(xì)胞表面Marker,再對細(xì)胞進(jìn)行固定破膜,最后對胞內(nèi)或核內(nèi)Marker染色。此時(shí)細(xì)胞表面的Marker盡量避免使用串聯(lián)染料,因?yàn)椤肮潭ā比菀讓Υ?lián)熒光素造成影響。

一般來說,絕大部分CD分子指標(biāo),都是細(xì)胞表面指標(biāo);IL白介系列、IFN-γ、TNF-α等,屬于胞內(nèi)指標(biāo);而常見的核內(nèi)染色指標(biāo)是Foxp3。
確認(rèn)Marker表達(dá)位置的同時(shí),我們還需要了解Marker的表達(dá)量。前面提到過“強(qiáng)弱搭配”,我們需要通過表達(dá)量的強(qiáng)弱,來搭配熒光素的弱強(qiáng)。
通常,根據(jù)待測細(xì)胞類型中,相應(yīng)抗原的表達(dá)量,可以粗略地將抗原分子分為三類:
01
很容易鑒定、容易區(qū)分陰陽性細(xì)胞群、陰陽性峰明顯分開的抗原。例如: CD3,CD4,CD19等。
02
很容易鑒定、較高水平表達(dá)、經(jīng)常連續(xù)性表達(dá)。例如: CD27,CD28,CD45RA, CD45RO等。
03
低水平表達(dá)、激活性Marker、未知但關(guān)鍵。例如: CD25,STAT5,F(xiàn)oxp3等。



表達(dá)量的強(qiáng)弱,可以參考廠家的質(zhì)檢結(jié)果,但更多地需要參考文獻(xiàn)里具體細(xì)胞群體的表達(dá)。
步驟三,了解實(shí)驗(yàn)所用流式細(xì)胞儀的配置信息,包括:流式細(xì)胞儀的激光器、檢測通道和濾光片等。
上期提到:流式細(xì)胞儀是同時(shí)檢測多種熒光的,這些熒光之間可能存在干擾。我們需要根據(jù)流式細(xì)胞儀的通道,來確認(rèn)有哪些熒光素可以選擇,這樣可以在后期搭配的時(shí)候,盡量避免干擾。如果沒有儀器的通道信息,是無法去確定哪些熒光素可供選擇的。可以說,如果沒有儀器通道信息,配色就是“無源之水,無本之木”。
通過儀器通道信息,確認(rèn)可以選擇哪些熒光素后,我們還需要了解熒光素的信息,確認(rèn)這些熒光素的激發(fā)波長和發(fā)射波長、接收該熒光的濾光片等信息,是否和流式細(xì)胞儀的通道一致。

▲ 常見熒光基團(tuán)信息
步驟四,了解熒光素的強(qiáng)度。
下表列出了常見熒光素的強(qiáng)度:

在已確定Marker的強(qiáng)弱,和流式細(xì)胞儀可檢測的熒光素的強(qiáng)弱后,我們要遵循“強(qiáng)弱搭配原則”,進(jìn)行配色。
強(qiáng)表達(dá)抗原,可以選擇弱熒光素,也可以選擇強(qiáng)熒光素。
如下圖所示,強(qiáng)表達(dá)抗原CD3,選擇弱熒光素FITC或強(qiáng)熒光素APC,對實(shí)驗(yàn)結(jié)果影響不大。


弱表達(dá)抗原,一定要選擇強(qiáng)熒光素。
如下圖所示,弱表達(dá)的抗原CD25,選擇弱熒光素PerCP,會導(dǎo)致陰陽性細(xì)胞群分不開。如果選擇強(qiáng)熒光素PE,可以看到明顯的陽性細(xì)胞群。


當(dāng)然,有些老師在配色時(shí),也會遇到一些其他的問題,如:細(xì)胞樣本有自發(fā)熒光、細(xì)胞處理容易出現(xiàn)死細(xì)胞(需要額外增加死活細(xì)胞染料)等。因此,我們需要特別注意,將對應(yīng)通道的熒光檢測信息,預(yù)留給自發(fā)熒光,或者死活染料檢測。

相信在了解了流式配色的基本原則及操作步驟后,大家的實(shí)驗(yàn)也能更加順利地開展啦~
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