• 動物實驗的局限性：超過90%在動物實驗中看似安全有效的藥物，因安全性和/或有效性問題未能獲得FDA批準。動物數據在預測藥物成功方面表現不佳，尤其是在癌癥、阿爾茨海默病和炎癥性疾病等常見疾病中。

  
  

• 倫理和成本問題：動物實驗存在倫理爭議，且成本高昂，例如單克隆抗體（mAb）的開發成本高達6.5億至7.5億美元，耗時長達9年。

  
  

• 政策支持：2022年，國會通過FDA現代化法案2.0，明確授權使用非動物替代方法支持新藥申請，并取消了生物類似藥申請中動物研究的要求。

【實驗方案】Kirkstall Quasi Vivo肝臟多細胞串聯芯片模型研究輻射性肝損傷及藥物干預

 引言

輻射性肝損傷（Radiation-Induced Liver Disease, RILD）是放療患者及核輻射暴露人群的重要并發癥，目前缺乏有效治療手段。傳統體外模型（如靜態培養或單器官芯片）難以模擬肝臟復雜的微環境及多細胞交互作用。

英國Kirkstall Quasi Vivo系統通過動態流動培養和多器官串聯設計，可更真實地模擬體內生理條件。本研究基于Quasi Vivo系統構建肝臟多細胞串聯芯片模型（肝細胞、肝竇內皮細胞、Kupffer細胞及肝星狀細胞），用于研究輻射損傷機制及抗氧化劑NACA的干預效果。

                                    材料與方法

1. 芯片使用與細胞接種

1.1串聯器官芯片系統：Kirkstall Quasi Vivo串聯芯片灌流培養系統，配備肝臟多腔室芯片（含獨立肝細胞腔與非實質細胞腔，腔間通過多孔膜分隔）。

1.2細胞來源：原代人肝細胞（Hepatocytes）、肝竇內皮細胞（LSECs）、Kupffer細胞及肝星狀細胞（HSCs），購自商業供應商（如Lonza）。

1.3 細胞接種：

  1. 肝細胞腔：以3.5×10? cells/mL密度接種至膠原/纖連蛋白包被的上腔室，培養基為Williams' E培養基（含10% FBS、1% ITS）。

  2. 非實質細胞腔：LSECs（4×10? cells/mL）、Kupffer細胞（2×10? cells/mL）、HSCs（0.1×10? cells/mL）混合接種至下腔室，培養基為含2% FBS的Williams' E培養基。

  3. 動態培養：系統流速設為30 μL/h，模擬肝竇血流剪切應力，連續培養5天至細胞功能穩定。

2. 輻射處理與藥物干預

2.1 輻射條件：使用X-Rad 320輻照儀，單次劑量8 Gy（基于前期劑量效應曲線確定），對照組為0 Gy。

2.2 藥物預處理：NACA（375 μM）于輻射前3小時加入培養基，持續干預至實驗終點。

2.3 時間節點：輻射后6 h、24 h、7天收集樣本。

3. 樣品采集與分析

3.1 RNA測序：分別裂解肝細胞與非實質細胞，TRIzol法提取總RNA。全基因組RNA測序（Illumina NovaSeq 6000），分析差異表達基因（DESeq2，FDR<0.05）。

3.2 免疫熒光檢測： γ-H2AX（DNA損傷）、CD31（LSECs標志）、α-SMA（HSCs活化）染色，ImageJ定量分析。

3.3 生化檢測：LDH釋放（細胞毒性）、ELISA檢測IL-6、VCAM-1（炎癥）、Triglyceride（肝細胞脂代謝）。通路分析：IPA（Ingenuity Pathway Analysis）驗證輻射相關通路（如p53信號、鐵死亡）。

- 多器官擴展：將肝臟芯片與腸芯片或血管芯片串聯，研究全身輻射暴露下的肝-腸/肝-血管交互作用（需額外優化流速與培養基兼容性）。

本研究方案利用Kirkstall Quasi Vivo系統構建動態肝臟多細胞模型，模擬輻射性肝損傷的病理進程，并驗證NACA的干預效果。該模型為輻射防護藥物篩選及機制研究提供了高效、仿生的體外平臺。

輻射損傷表型：肝細胞DNA損傷（γ-H2AX↑）、脂代謝紊亂（Triglyceride↑）；LSECs死亡（CD31↓）、HSCs活化（α-SMA↑）、炎癥因子（IL-6、VCAM-1↑）。

NACA保護效應：減少DNA損傷及細胞凋亡，抑制HSCs活化與炎癥通路。

 Kirkstall Quasi Vivo串聯芯片灌流培養系統優勢：

   - 動態流動增強細胞間信號傳遞，更真實模擬體內微環境。

   - Quasi Vivo系統動態剪切力促進LSECs功能維持，多腔室設計支持肝細胞與非實質細胞交互。串聯器官芯片擴展潛力為研究多器官輻射損傷提供平臺。